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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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7 w, I: ~0 T( ^, N  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03/ g0 ?9 D* T+ l  N: b  G9 c
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......
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8 M3 K( B6 c3 Y5 G$ `) R" E3 B6 W5 I  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
) ^0 z1 M9 T' B2 {9 DAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
- S/ F0 e* p* m7 m9 J) [& n. ~  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus * J) @1 T, q; [5 L$ r2 A
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
6 A1 ~: _7 y( Q7 w1 材料与方法
2 V* V+ h$ L3 f" B9 C1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 & D5 ~) o" u7 L$ `
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 ' j4 {/ ]* t7 E' \- N+ K
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降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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183
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165
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
5 u' M/ d  m) V$ J' ^
% p% A$ ~. i, M. T5 p% e# _/ f! O
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 2 t. X/ W4 }+ C- m$ l% M
 
6 y  E0 S& ?( D3 L, @  L1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
; B" _1 c( ?) g3 {6 f% j2 结果分析 , U* Q* }4 M3 O8 V9 l- E
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
3 @2 p6 \! A9 a( g表3  4株机油降解菌形态特征 : j7 A  m( g8 H7 l2 h& T

4 L- {. t" }! |8 K- R  Z
. y% x: I' |& a6 d1 F, u% h7 m! _$ s$ j4 W; m" E: n4 Y$ q( K# |
. \2 p4 k' F& T6 v- }6 D& l
形态特征: v/ l0 \5 }4 G5 ~
ZL1
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淡黄! x8 ?% [- ^) T/ H: Z: i! I* S
粉红
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菌落形态
5 k8 q! \; O/ X+ e5 Q+ k/ h8 `不透明,微隆起,全缘,
7 u) a+ @. L% [7 w1 ^& @半透明,圆形
0 I2 c0 F5 D, {) X+ `半透明,圆形,隆起,) W: H5 ?- x$ p& N+ Q
不透明,米粒状突起,, Z! Y6 r3 c6 x! g! O+ L

8 W3 M9 G% e1 \2 j' c$ ]( b 
: s9 Q' d6 F- S* [0 a8 k4 C光滑,有光泽" E6 p" f. k; y& M- P
光滑,较干燥
; q0 |* T4 V8 i# F. b& `光滑,有光泽7 F9 [) o) s- N
较湿润- p6 e. \" t" ~; R

& n2 ]. Y- `3 M$ O" _7 v" E菌体形态& \! }2 Q) ~+ l9 y$ r! Y( L, q
短杆
" s8 h* l# U% b4 j& }- H2 p& m球形
/ [; U5 I' D) Z( N" m杆状
$ {7 j4 b8 `( U" x4 C, \" ]丝状
6 ?- A# ^6 m/ o5 z3 X  O  t
9 _" c) _( ]9 M; u5 n% p菌体大小/μm
% k! R$ I5 j2 K(0.3-0.8)×(0.6-1.0): \/ `  h0 x' u$ g# N* Y' y4 U; [
Φ0.3) q$ G( \7 z4 t4 |! e7 e0 _
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
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! E1 W% A  Z8 ]: }9 f" K) ~% R革兰氏染色4 A- I2 _, R  [% ]
G
7 ^) i3 \+ p# }( ^0 @6 pG0 Q  |1 i! ]- b# f7 u' v# n
G/ ^& q, I/ ]) {8 w# K
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0 G& y: p" U$ v( j, T  M) a- ]+ `" x( W
初步鉴定
$ y: `( N5 `1 ~. N* J& k黄杆菌属! J+ R+ Z9 K) U0 S3 L
微球菌属' B2 A6 l- _4 U, R5 N* W. V
假单胞菌属- p8 a8 K- O  \5 k. I5 U9 n  V
酵母菌属! H6 T$ }, M. H; y5 i) j
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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' ?: |5 \6 @* l+ H; @( I3 结论
' z# X$ V" I/ h' A  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 . B, t# \" B) T+ T
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5 D6 }3 {# Y/ \: E0 I  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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